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麻痹性貝類毒素試劑盒

麻痹性貝類毒素試劑盒

簡要描述:麻痹性貝類毒素試劑盒,采用抗體包被的方式進行酶聯(lián)檢測,反應時間為30min,即可準確判定樣本中麻痹性貝類毒素含量

產品型號: 000-1344

所屬分類:麻痹性貝類毒素試劑盒

更新時間:2024-12-09

廠商性質:生產廠家

詳情介紹

麻痹性貝類毒素酶聯(lián)試劑盒試劑盒基于競爭性ELISA酶聯(lián)免疫的方法,麻痹性貝類毒素的抗體包被于酶標孔內,樣品與麻痹性貝類毒素-酶標記物加入到微孔內,若樣品中有麻痹性貝類毒素殘留,它將與貝類毒素-酶標記物共同競爭酶標板包被的抗體。加入TMB底物后,顏色發(fā)生變化,經酶標儀檢測讀數(shù)后確定樣品中貝類毒素的含量。顏色的深淺與毒素的殘留量成反比

警告

實驗前請閱讀以下文字,以保證獲得實驗效果。

ü 標準品中含有腹瀉性貝類毒素,請小心使用。

ü 不要使用過期的試劑盒。

ü 不同批次的試劑盒不要混用,抗體和微孔板具有盒與批次的特異性。

ü 盡量保持室溫(25±2.5),避免在通風口操作防止溫度過低,過熱和/或者蒸發(fā)。同樣的,不要在陽光直射下實驗,防止過熱及蒸發(fā)。在孵育期間,如果工作臺溫度過低,應該鋪墊若干紙巾或者其他物料。

ü 加入樣品或者試劑到空的微孔板時,吸嘴靠于微孔接近底部,并保持接觸。

ü 孵育時間的計算越規(guī)范越好,保持添加標準品的一致性,先添加標準品后添加樣品。

ü 從低濃度到高濃度地添加標準品,降低影響標準品曲線質量的風險。

ü 將微孔板置于放有干燥劑的密封袋中,冷藏保存。

酶聯(lián)免疫反應測試步驟

以下為計算份量的表格,用戶可根據自己的需要來確定需要配置多少試劑。

組分

每孔所需量

24個反應所需量

貝類毒素酶標物

50uL

1.2mL

工作洗液

2.0ml

48ml

終止液

50mL

1.2ml

TMB底物

100mL

2.4ml

 

 

1) 加入50mL標準品或樣品在所設定的孔中;

2) 每孔加入50mL 貝類毒素酶標物后,輕輕混勻20秒;

3) 室溫(25±2.5)℃下避光孵育40分鐘;

4) 每次加入1×洗液250mL,洗板3次,最后一次洗板后,倒置酶標板于干燥紙巾上清除多余水分;

5) 加入100mL TMB底物,輕輕晃動20秒以便搖勻,避光條件下室溫(25±2.5)孵育12分鐘;

6) 加入50mL終止液終止反應;

7) 酶標儀450nm讀數(shù)。

4.結果計算

(1) 用平均相對吸光值建立標準曲線(以相對吸光值為縱坐標,濃度為橫坐標)

相對吸光度值 (%) = (標準或樣品吸光度值/零標準吸光度值) ´ 100

(2) 0標準品點OD在1.2-1.5之間,IC 50 在0.6-1.5ng/ml 采用四參數(shù)擬合曲線進行含量的統(tǒng)計



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